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Enregistrement W2592336675 · doi:10.1242/dmm.026765

A rapid and effective method for screening, sequencing and reporter verification of engineered frameshift mutations in zebrafish

2017· article· en· W2592336675 sur OpenAlexafffund
Sergey V. Prykhozhij, Shelby L. Steele, Babak Razaghi, Jason N. Berman

Notice bibliographique

RevueDisease Models & Mechanisms · 2017
Typearticle
Langueen
DomaineBiochemistry, Genetics and Molecular Biology
ThématiqueCRISPR and Genetic Engineering
Établissements canadiensDalhousie University
Organismes subventionnairesTerry Fox Research InstituteCanadian Institutes of Health ResearchDalhousie University
Mots-clésFrameshift mutationBiologyCRISPRGeneticsZebrafishCas9GeneGenome editingMutantMutationExonGenetic screenComputational biology

Résumé

récupéré en direct d'OpenAlex

Clustered Regularly Interspaced Palindromic Repeats (CRISPR)/Cas9 adaptive immunity against pathogens in bacteria has been adapted for genome editing and applied in zebrafish (Danio rerio) to generate frameshift mutations in protein-coding genes. Although there are methods to detect, quantify and sequence CRISPR/Cas9-induced mutations, identifying mutations in F1 heterozygous fish remains challenging. Additionally, sequencing a mutation and assuming that it causes a frameshift does not prove causality because of possible alternative translation start sites and potential effects of mutations on splicing. This problem is compounded by the relatively few antibodies generated to zebrafish proteins, limiting validation at the protein level. To address these issues, we developed a detailed protocol to screen F1 mutation carriers, and clone and sequence identified mutations. In order to verify that mutations actually cause frameshifts, we created a fluorescent reporter system that can detect frameshift efficiency based on the cloning of wild-type and mutant cDNA fragments and their expression levels. As proof-of-principle, we applied this strategy to three CRISPR/Cas9-induced mutations in pycr1a, chd7 and hace1 genes. An insertion of 7 nucleotides in pycr1a, resulted in the first reported observation of exon skipping by CRISPR/Cas9-induced mutations in zebrafish. However, of these 3 mutant genes, the fluorescent reporter revealed effective frameshifting exclusively in the case of a 2-nucleotide deletion in chd7, suggesting activity of alternative translation sites in the other two mutants even though pycr1a exon-skipping deletion is likely deleterious. This article provides a protocol for characterizing frameshift mutations in zebrafish, and highlights the importance of checking mutations at the mRNA level and verifying their effects on translation by fluorescent reporters when antibody detection of protein loss is not possible.

Récupéré en direct depuis OpenAlex et désinversé. Les résumés ne sont pas conservés dans cette base de données : les index inversés représentent 8,6 Go des 9,3 Go de texte de la base, et le serveur dispose de 13 Go libres.

Comment cette classification a été obtenuedéplier

Prédiction machine sur la base complète

Imitation des enseignants

Ni prévalence calibrée, ni vérité terrain. Validation humaine à venir. Le volet Gemma est une étiquette directe du modèle pour chaque travail de la base, lue sur la notice réduite au titre. Le volet Codex est un classifieur appris des 10 348 étiquettes directes de Codex et calibré sur les taux pondérés de l'échantillon; les champs sans appui suffisant ne portent aucun appel Codex. Le mode candidate est l'union des deux volets; le consensus est leur intersection. Ces sorties portent le statut machine_predicted_unvalidated et ne sont pas des étiquettes humaines.

score de la tête « metaresearch » (Codex)0,001
score de la tête « metaresearch » (Gemma)0,001
Version: metacan-v3-hybrid-931329e0061cStatut de validation: machine_predicted_unvalidated
Catégories candidatesaucune
Catégories consensuellesaucune
DomaineSignal candidat: aucune · Signal consensuel: aucune
Devis d'étudeSignal candidat: Expérimental (laboratoire) · Signal consensuel: Expérimental (laboratoire)
GenreSignal candidat: Méthodes · Signal consensuel: Méthodes
Score de désaccord entre enseignants0,004
Score d'incertitude au seuil0,013

Scores du classifieur distillé par catégorie (deux têtes)

CatégorieCodexGemma
Métarecherche0,0010,001
Méta-épidémiologie (sens strict)0,0020,001
Méta-épidémiologie (sens large)0,0010,001
Bibliométrie0,0020,001
Études des sciences et des technologies0,0010,001
Communication savante0,0010,001
Science ouverte0,0010,001
Intégrité de la recherche0,0010,002
Charge utile insuffisante (le modèle a refusé de juger)0,0040,003

Scores machine (provisoires)

Les deux têtes enseignantes du modèle étudiant, lues sur ce travail. Un score ordonne la base pour la relecture; il n'affirme jamais une catégorie, et le statut de validation accompagne chaque rangée tel quel.

Scores de référence d'un modèle non mature (critères de maturité non atteints, 7 itérations). Un score ordonne; il n'affirme jamais une catégorie.

Tête enseignante Opus0,018
Tête enseignante GPT0,317
Écart entre enseignants0,299 · la distance entre les deux têtes enseignantes sur ce seul travail
Statut de validationscore_only:v0-immature-baseline · tel quel depuis la passe de notation : score_only signifie que le nombre peut ordonner les travaux, et qu'aucune étiquette de catégorie n'en découle

Classification

machine, non validée

Prédiction automatique; un appel candidat d’une seule source (Gemma direct ou Codex distillé), pas un consensus.

Les modèles n’ont appliqué aucune catégorie : rien dans la taxonomie ne correspondait à ce travail.
Devis d'étudeExpérimental (laboratoire)
Domainenon disponible
GenreMéthodes

Le détail, modèle par modèle et score par score, se trouve en fin de page sous « Comment cette classification a été obtenue ».

En bref

Citations61
Publié2017
Routes d'admission2
Résumé présentoui

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