Comparison of sequence‐specific oligonucleotide probe vs next generation sequencing for HLA‐A, B, C, DRB1, DRB3/B4/B5, DQA1, DQB1, DPA1, and DPB1 typing: Toward single‐pass high‐resolution HLA typing in support of solid organ and hematopoietic cell transplant programs
Notice bibliographique
Résumé
Many clinical laboratories supporting solid organ transplant programs use multiple HLA genotyping technologies, depending on individual laboratory needs. Sequence-specific primers and quantitative polymerase chain reaction (qPCR) serve the rapid turnaround necessary for deceased donor workup, while sequence-specific oligonucleotide probe (SSOP) technology is widely employed for higher volumes. When clinical need mandates high-resolution data, Sanger sequencing-based typing (SBT) has been the "gold standard." However, all those methods commonly yield ambiguous typing results that utilize valuable laboratory resources when resolution is required. In solid organ transplantation, high-resolution typing may provide critical information for highly sensitized patients with donor-specific anti-HLA antibodies (DSA), particularly when DSA involve HLA alleles not discriminated by SSOP typing. Arguments against routine use of SBT include assay complexity, long turnaround times (TAT), and increased costs. Here, we compare a next generation sequencing (NGS) technology with SSOP for accuracy, effort, turnaround time, and level of resolution for genotyping of 11 HLA loci among 289 specimens from five clinical laboratories. Results were concordant except for SSOP misassignments in eight specimens and 21 novel sequences uniquely identified by NGS. With few exceptions, SSOP generated ambiguous results while NGS provided unambiguous three-field allele assignments. For complete HLA genotyping of up to 24 samples by either SSOP or NGS, bench work was completed on day 1 and typing results were available on day 2. This study provides compelling evidence that, although not viable for STAT typing of deceased donors, a single-pass NGS HLA typing method has direct application for solid organ transplantation.
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Comment cette classification a été obtenuedéplier
Prédiction distillée sur la base complète
Imitation des enseignantsNi prévalence calibrée, ni vérité terrain. Validation humaine à venir. Apprise à partir de 10 348 étiquettes directes de Codex et de 10 348 étiquettes directes de Gemma. Le mode candidate est l'union des têtes enseignantes seuillées; le consensus est leur intersection. Ces sorties portent le statut machine_predicted_unvalidated et ne sont ni des étiquettes humaines ni des étiquettes directes de modèles de pointe.
Scores Codex et Gemma par catégorie
| Catégorie | Codex | Gemma |
|---|---|---|
| Métarecherche | 0,000 | 0,000 |
| Méta-épidémiologie (sens strict) | 0,000 | 0,000 |
| Méta-épidémiologie (sens large) | 0,001 | 0,000 |
| Bibliométrie | 0,000 | 0,000 |
| Études des sciences et des technologies | 0,000 | 0,000 |
| Communication savante | 0,000 | 0,000 |
| Science ouverte | 0,000 | 0,000 |
| Intégrité de la recherche | 0,000 | 0,000 |
| Charge utile insuffisante (le modèle a refusé de juger) | 0,000 | 0,000 |
Scores machine (provisoires)
Les deux têtes enseignantes du modèle étudiant, lues sur ce travail. Un score ordonne la base pour la relecture; il n'affirme jamais une catégorie, et le statut de validation accompagne chaque rangée tel quel.
Scores de référence d'un modèle non mature (critères de maturité non atteints, 7 itérations). Un score ordonne; il n'affirme jamais une catégorie.
score_only:v0-immature-baseline · tel quel depuis la passe de notation : score_only signifie que le nombre peut ordonner les travaux, et qu'aucune étiquette de catégorie n'en découleClassification
machine, non validéePrédiction automatique; un appel candidat d’une seule tête enseignante, pas un consensus.
Le détail, modèle par modèle et score par score, se trouve en fin de page sous « Comment cette classification a été obtenue ».