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Enregistrement W3083531468 · doi:10.1093/synbio/ysaa015

CRAGE-mediated insertion of fluorescent chromosomal markers for accurate and scalable measurement of co-culture dynamics in Escherichia coli

2020· article· en· W3083531468 sur OpenAlexafffund
Avery J. C. Noonan, Yilin Qiu, Joe C. H. Ho, Jewel Ocampo, K A Vreugdenhil, R Alexander Marr, Zhiying Zhao, Yasuo Yoshikuni, Steven Hallam

Notice bibliographique

RevueSynthetic Biology · 2020
Typearticle
Langueen
DomaineBiochemistry, Genetics and Molecular Biology
ThématiqueViral Infectious Diseases and Gene Expression in Insects
Établissements canadiensGenome British ColumbiaUniversity of British Columbia
Organismes subventionnairesNatural Sciences and Engineering Research Council of CanadaOffice of ScienceMitacsGenome British ColumbiaJoint Genome InstituteU.S. Department of Energy
Mots-clésBiosensorGreen fluorescent proteinFluorescencePopulationEscherichia coliBiological systemChemistryMetabolic engineeringBiologyBiophysicsBiochemistryEnzymePhysicsGene

Résumé

récupéré en direct d'OpenAlex

Abstract Monitoring population dynamics in co-culture is necessary in engineering microbial consortia involved in distributed metabolic processes or biosensing applications. However, it remains difficult to measure strain-specific growth dynamics high-throughput formats. This is especially vexing in plate-based functional screens leveraging whole-cell biosensors to detect specific metabolic signals. Here we develop an experimental high-throughput co-culture system to measure and model the relationship between fluorescence and cell abundance, combining chassis-independent recombinase-assisted genome engineering (CRAGE) and whole-cell biosensing with a PemrR-green fluorescent protein (GFP) monoaromatic reporter used in plate-based functional screening. CRAGE was used to construct E. coli EPI300 strains constitutively expressing red fluorescent protein (RFP) and the relationship between RFP expression and optical density (OD600) was determined throughout the EPI300 growth cycle. A linear equation describing the increase of normalized RFP fluorescence during deceleration phase was derived and used to predict biosensor strain dynamics in co-culture. Measured and predicted values were compared using flow cytometric detection methods. Induction of the biosensor lead to increased GFP fluorescence normalized to biosensor cell abundance, as expected, but a significant decrease in relative abundance of the biosensor strain in co-culture and a decrease in bulk GFP fluorescence. Taken together, these results highlight sensitivity of population dynamics to variations in metabolic activity in co-culture and the potential effect of these dynamics on the performance of functional screens in plate-based formats. The engineered strains and model used to evaluate these dynamics provide a framework for optimizing growth of synthetic co-cultures used in screening, testing and pathway engineering applications

Récupéré en direct depuis OpenAlex et désinversé. Les résumés ne sont pas conservés dans cette base de données : les index inversés représentent 8,6 Go des 9,3 Go de texte de la base, et le serveur dispose de 13 Go libres.

Comment cette classification a été obtenuedéplier

Prédiction distillée sur la base complète

Imitation des enseignants

Ni prévalence calibrée, ni vérité terrain. Validation humaine à venir. Apprise à partir de 10 348 étiquettes directes de Codex et de 10 348 étiquettes directes de Gemma. Le mode candidate est l'union des têtes enseignantes seuillées; le consensus est leur intersection. Ces sorties portent le statut machine_predicted_unvalidated et ne sont ni des étiquettes humaines ni des étiquettes directes de modèles de pointe.

score de la tête « metaresearch » (Codex)0,000
score de la tête « metaresearch » (Gemma)0,000
Version: codex-gemma-dda1882f352aStatut de validation: machine_predicted_unvalidated
Catégories candidatesaucune
Catégories consensuellesaucune
DomaineSignal candidat: aucune · Signal consensuel: aucune
Devis d'étudeSignal candidat: Expérimental (laboratoire) · Signal consensuel: Expérimental (laboratoire)
GenreSignal candidat: Empirique · Signal consensuel: Empirique
Score de désaccord entre enseignants0,012
Score d'incertitude au seuil0,423

Scores Codex et Gemma par catégorie

CatégorieCodexGemma
Métarecherche0,0000,000
Méta-épidémiologie (sens strict)0,0000,000
Méta-épidémiologie (sens large)0,0000,000
Bibliométrie0,0000,000
Études des sciences et des technologies0,0000,000
Communication savante0,0000,000
Science ouverte0,0000,000
Intégrité de la recherche0,0000,000
Charge utile insuffisante (le modèle a refusé de juger)0,0000,000

Scores machine (provisoires)

Les deux têtes enseignantes du modèle étudiant, lues sur ce travail. Un score ordonne la base pour la relecture; il n'affirme jamais une catégorie, et le statut de validation accompagne chaque rangée tel quel.

Scores de référence d'un modèle non mature (critères de maturité non atteints, 7 itérations). Un score ordonne; il n'affirme jamais une catégorie.

Tête enseignante Opus0,014
Tête enseignante GPT0,256
Écart entre enseignants0,242 · la distance entre les deux têtes enseignantes sur ce seul travail
Statut de validationscore_only:v0-immature-baseline · tel quel depuis la passe de notation : score_only signifie que le nombre peut ordonner les travaux, et qu'aucune étiquette de catégorie n'en découle

Classification

machine, non validée

Prédiction automatique; un appel candidat d’une seule tête enseignante, pas un consensus.

Les modèles n’ont appliqué aucune catégorie : rien dans la taxonomie ne correspondait à ce travail.
Devis d'étudeExpérimental (laboratoire)
Domainenon disponible
GenreEmpirique

Le détail, modèle par modèle et score par score, se trouve en fin de page sous « Comment cette classification a été obtenue ».

En bref

Citations6
Publié2020
Routes d'admission2
Résumé présentoui

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