MétaCan
Menu
Retour à la cohorte
Enregistrement W6931592040 · doi:10.5281/zenodo.7270391

Decomposition of Lignin and Holocellulose of Pinus roxburghii Sar. (Pinaceae) Needle Leaves, Twigs and Barks by Fungal Isolates from Virgin Forest Ecosystem of Doddabetta belt of Nilgiris

2022· article· en· W6931592040 sur OpenAlexaboutno aff

Notice bibliographique

RevueZenodo (CERN European Organization for Nuclear Research) · 2022
Typearticle
Langueen
DomaineMedicine
ThématiqueMyasthenia Gravis and Thymoma
Établissements canadiensnon disponible
Organismes subventionnairesnon disponible
Mots-clésPinus roxburghiiLigninMyceliumDecomposerPileusDecompositionEcosystemMushroom

Résumé

récupéré en direct d'OpenAlex

ABSTRACT Decomposition of lignin and holocellulose study was conducted in Pinus roxburghii Sar. (Pinaceae) needle leaves, twigs and barks from the virgin forest ecosystem of Doddabetta belt of Nilgiris during monsoon periods June to November 2014. Four lignin and holocellulose degrading fungi which were dominating the P. roxburghii forest ecosystem were identified, viz., Amanita muscaria, Coprinus micaceus, Cortinarius collinitus and Tricholoma album. The spores collected from the fruit bodies / the mycelia from the degrading material were inoculated individually to the experimental needle leaves, twigs and barks to analyse the decomposition potentials of lignin and holocellulose. The percentage of degradation of lignin, holocellulose and hot water soluble content varied with the samples and as well as the fungal isolates. However the degradation is a long process which certainly adds nutrients to the virgin forest ecosystem. Keywords: Decomposition, Holocellulose, Lignin, Pinus roxburghii REFERENCES ASTMD1104-56, Method of test of holocellulose in wood. http://www.astm.org/standards/D1104.htm (1978). ASTMD1110-87, Standard Test Methods for water solubility of wood. American Standard Test Methods. ASTM International, West Conshohocken, PA (2007). Blanchette, R. A., Obst, J. R. and Timell, T. E., Biodegradation of compression wood and tension wood by white and brown rot fungi. Holzforschung. 48: 34-42 (1994). Blanchette, R. A., Degradation of lignocellulose complex in wood. Canadian Journal of Botany. 73: 999-1010 (1995). Dekker, R. F. H., Barbosa, A. M. and Sargent, K., The effect of lignin-related compounds on the growth and production of laccases by the ascomycete Botryosphaeria sp. Enz. Microbiol. Technol. 30: 374-380 (2002). Djarwanto and Tachibana, S., Screening of fungi capable of degrading lignocelluloses from plantation forests. Pak. J. Biol. Sci. 12: 669-675 (2009). Dubeux, Jr. J. C. B., Sollenberger, L. E., Interrante, S. M., Vendramini, J. M. B. and Stewart, Jr. R. L., Litter decomposition and mineralization in bahia grass pastures managed at different intensities. Crop Science. 46: 1305-1310 (2006). Fackler, K. C., Gradinger, C., Hinterstoisser, B., Messner, K. and Schwanninger, M., Lignin degradation by white rot fungi on spruce wood shavings during short-time solid-state fermentations monitored by near infrared spectroscopy. Enzyme Microbiol. Technol. 39: 1476-1483 (2006). Fioretto, A., Di Nardo, C., Papa, S. and Fuggi, A., Lignin and cellulose degradation and nitrogen dynamics during decomposition of three leaf litter species in a mediterranean ecosystem. Soil Biology and Biochemistry. 37: 1083-1091 (2005). Hakala, T. K., Characterization of the lignin - modifying enzymes of the selective white-rot fungus Physisporinus rivulosus. Helsinki University Printing House, Helsinki, Finland. pp. 60 (2007). Levine, L. H., Heyenga, A. G., Levine, H. G., Choi, J. W., Davin, L. B., Krihorian, A. D. and Lewis, N. G., Cell wall architecture and lignin composition of wheat developed in microgravity environment. Physiochemistry. 57: 835-846 (2001). Martinez, A. T., Speranza, M., Ruiz-Duenas, F. J., Ferreira, P. and Camarero, S., Biodegradation of lignocellulosic: Microbiol, chemical and enzymatic aspects of fungal attack to lignin. International Journal of Microbiology. 8: 195-204 (2005). Miura, K. and Kudo, M., An agar-medium for aquatic hypomycetes. Transactions of the Mycological Society of Japan. 11: 116-118 (1970). M. N. Abubacker and B. Kirthiga. Bioremediation potential of textile Aspergillus flavus teak 07 Against textile dye and their toxicity assessment Biolife 3(1); 54-60 (2015). Ohkuma, M., Maeda, Y., Johjima, T. and Kudo, T., Lignin degradation and roles of white rot fungi: Study on an efficient symbiotic system in fungus growing termites and its application to bioremediation. Riken Rev. Foe. Econ. Sci. Res. 42: 39-42 (2001). Osono, T., Fukesawa, Y. and Takeda, H., Role of diverse fungi in larch needle-litter decomposition. Mycologia. 95: 820-826 (2003). Osono, T. and Takeda, H., Fungal decomposition of Abies needle and Betula leaf litter. Mycologia. 98: 172-179 (2006). PaPanda, S.S, Sahoo, K, Muduli,S.D, Sahoo,G, Ahemad, M.D.J, Nayak, B.B and Dhal, N.K chromium tolerant indigenous fungal strains from Industrial effluents of Anugul district, Odisha, India. Biolife. 2(2), 634-640 (2012). Petterson, R. C., The chemical composition of wood. In: The chemistry of solid wood. Rowell, R. M. (Ed.), Americal Chemical Society, Washington, DC, pp. 57-126 (1984). Pinto, P. C., Evtuguin, D. V. and Neto, C. P., Structure of hardwood gucuronoxylans: Modifications and impact on pulp retention during wood kraft pulping. Carbohyd. Polym. 60: 489-497 (2005). Saparrat, M. C. N., Rocca, M., Aulicino, M., Arambarri, A. M. and Balatti, P. A., Celtis tala and Scutia buxifolia leaf litter decomposition by selected fungi in relation to their physical and chemical properties and lignocellulolytic enzyme activity. Eur. J. Soil Biol. 44: 400-407 (2008). Swift, M. J., Heal, O. M. and Anderson, J. M., Decomposition in terrestrial ecosystems. Journal of Ecology. 34: 45-50 (1979). TAPPI Standard Methods, Fibrous Materials and Pulp Testing. Technical Association of Pulp and Paper Industry, Atlanta (2009). Tuomela, M., Vikman, M., Hatakka, A. and Itavaara, M., Biodegradation of lignin in a compost environment: A review. Bioresour. Technol. 72: 169-183 (2000). Vane, C. H., Drag, T. C. and Snape, C. E., Bark decay by the white-rot fungus Lentinula edodes, Polysaccharide loss, lignin resistance and the unmasking of suberin. Int. Biodeter. Biodegradat. 57: 14-23 (2006). Vargas-Garcia, M. C., Suarez-Estrella, F., Lopez, M. J. and Moreno, J., In vitro studies on lignocelluloses degradation by microibial strains isolated from composting process. Int. Biodeter. Biodegradat. 59: 322-328 (2007). Watanabe, T., Watanabe, Y. and Nakamura, K., Biodegradation of wood and dual cultures of selected two fungi determined by chopstick method. J. Biosci. Bioeng. 95: 623-626 (2003). Willfor, S. A., Sundberg, A., Pranovich, A. and Holmbom, B., Polysaccharides in some industrially important hardwood species. Wood Science Technology. 39: 601-617 (2005).

Récupéré en direct depuis OpenAlex et désinversé. Les résumés ne sont pas conservés dans cette base de données : les index inversés représentent 8,6 Go des 9,3 Go de texte de la base, et le serveur dispose de 13 Go libres.

Comment cette classification a été obtenuedéplier

Prédiction machine sur la base complète

Imitation des enseignants

Ni prévalence calibrée, ni vérité terrain. Validation humaine à venir. Le volet Gemma est une étiquette directe du modèle pour chaque travail de la base, lue sur la notice réduite au titre. Le volet Codex est un classifieur appris des 10 348 étiquettes directes de Codex et calibré sur les taux pondérés de l'échantillon; les champs sans appui suffisant ne portent aucun appel Codex. Le mode candidate est l'union des deux volets; le consensus est leur intersection. Ces sorties portent le statut machine_predicted_unvalidated et ne sont pas des étiquettes humaines.

score de la tête « metaresearch » (Codex)0,000
score de la tête « metaresearch » (Gemma)0,000
Version: metacan-v3-hybrid-931329e0061cStatut de validation: machine_predicted_unvalidated
Catégories candidatesaucune
Catégories consensuellesaucune
DomaineSignal candidat: aucune · Signal consensuel: aucune
Devis d'étudeSignal candidat: Expérimental (laboratoire) · Signal consensuel: Expérimental (laboratoire)
GenreSignal candidat: Empirique · Signal consensuel: Empirique
Score de désaccord entre enseignants0,003
Score d'incertitude au seuil0,006

Scores du classifieur distillé par catégorie (deux têtes)

CatégorieCodexGemma
Métarecherche0,0000,000
Méta-épidémiologie (sens strict)0,0000,000
Méta-épidémiologie (sens large)0,0000,000
Bibliométrie0,0000,000
Études des sciences et des technologies0,0000,000
Communication savante0,0000,000
Science ouverte0,0000,000
Intégrité de la recherche0,0000,000
Charge utile insuffisante (le modèle a refusé de juger)0,0000,000

Scores machine (provisoires)

Les deux têtes enseignantes du modèle étudiant, lues sur ce travail. Un score ordonne la base pour la relecture; il n'affirme jamais une catégorie, et le statut de validation accompagne chaque rangée tel quel.

Scores de référence d'un modèle non mature (critères de maturité non atteints, 7 itérations). Un score ordonne; il n'affirme jamais une catégorie.

Tête enseignante Opus0,011
Tête enseignante GPT0,223
Écart entre enseignants0,211 · la distance entre les deux têtes enseignantes sur ce seul travail
Statut de validationscore_only:v0-immature-baseline · tel quel depuis la passe de notation : score_only signifie que le nombre peut ordonner les travaux, et qu'aucune étiquette de catégorie n'en découle

Classification

machine, non validée

Prédiction automatique; un appel candidat d’une seule source (Gemma direct ou Codex distillé), pas un consensus.

Les modèles n’ont appliqué aucune catégorie : rien dans la taxonomie ne correspondait à ce travail.
Devis d'étudeExpérimental (laboratoire)
Domainenon disponible
GenreEmpirique

Le détail, modèle par modèle et score par score, se trouve en fin de page sous « Comment cette classification a été obtenue ».

En bref

Citations0
Publié2022
Routes d'admission1
Résumé présentoui

Explorer davantage

Même revueZenodo (CERN European Organization for Nuclear Research)Même sujetMyasthenia Gravis and ThymomaTravaux en français237 207