Uso de Gonadorelina [6-D-Phe] en la inducción al desove en cautiverio del chame Dormitator latifrons (Richardson, 1844)
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Abstract
RESUMEN | El chame Dormitator latifrons es una especie de interés comercial con gran potencial para la acuicultura; sin embargo, su cultivo depende principalmente de la captura de alevines desde el ambiente. Su reproducción en cautiverio no se encuentra totalmente controlada, pero hay experiencias con inductores análogos que han demostrado viabilidad en la liberación de gametos. Este trabajo evaluó el uso de Gonavet Veyx, Gonadorelina [6-D-Phe], un análogo sintético de la hormona liberadora de gonadotropinas (GnRH), como inductor al desove de D. latifrons. Ejemplares silvestres mantenidos en cautiverio fueron inducidos con Gonadorelina [6-D-Phe], y producido el desove, los huevos fueron mantenidos en tanques a salinidades de 5, 10 y 15‰. Se evaluó el número de huevos producidos, la fecundidad total y relativa, el porcentaje de eclosión y se hizo un seguimiento de las larvas. El 90% de las parejas de reproductores que fueron inducidas desovaron a las 48 h, particularmente durante la noche. Los huevos tuvieron un diámetro promedio de 293,3 ± 3,3 µm y su eclosión fue aproximadamente a las 17 h de incubación. La mejor eclosión se logró a una salinidad de 15‰ (95%), seguida de 10‰ (80%) y finalmente a los 5‰ (50%). Gonavet Veyx demostró ser un compuesto eficaz para inducir el desove de D. latifrons, logrando la obtención de huevos y larvas viables. Palabras clave: inducción desove, GnRH, LHRH, fecundidad, eclosión ABSTRACT | The Pacific fat sleeper Dormitator latifrons is a species of commercial interest with great potential for aquaculture; however, its culture depends mainly on the capture of fry from the wild. Its reproduction in captivity is not fully controlled, but there is experience with analog inducers that have demonstrated viability in releasing gametes. This work evaluated the use of Gonavet Veyx, Gonadorelin [6-D-Phe], a synthetic analog of the gonadotropin-releasing hormone (GnRH), as an inducer of spawning in D. latifrons. Captive wild specimens were induced with Gonadorelin[6-D-Phe], and once spawning was produced, the eggs were maintained in tanks at salinities of 5, 10, and 15 ‰. The number of eggs produced, total and relative fecundity, hatching percentage, and larval monitoring were assessed. Ninety percent of the pairs of broodstock that were induced spawned at 48 h, particularly during the night. Eggs had an average diameter of 293.3 ± 3.3 µm and hatched at approximately 17 h of incubation. The best hatching was achieved at a salinity of 15‰ (95%), followed by 10‰ (80%), and finally at 5‰ (50%). Gonavet Veyx proved to be an effective compound for induced spawning in D. latifrons, obtaining viable eggs and larvae. Keywords: Spawning induction, GnRH, LHRH, fecundity, hatching REFERENCIAS Abdo de la Parra M. I., Rodríguez-Ibarra L. E., García-Aguilar N., Velasco-Blanco G., & Ibarra-Castro L. (2013). Biotecnología para la producción masiva de juveniles del botete diana Sphoeroides annulatus: inducción hormonal y cultivo larvario. Revista de Biología Marina y Oceanografía 48(3):409-420. http://dx.doi.org/10.4067/S0718-19572013000300001 Agualsaca J. (2014). Adaptación de chame (Dormitator latifrons) sometido a cautiverio utilizando cuatro niveles de detritus y balanceado en su alimentación. Informe Proyecto de Investigación, Universidad de las Fuerzas Armadas – ESPE: 91 pp, https://repositoriobe.espe.edu.ec/server/api/core/bitstreams/71f40b37-9efa-4c42-a7c8-ecf3c784b30f/content Asmat R. (2015). Maduración sexual de Dormitator latifrons (Richardson 1844) en cautiverio. Tesis de pregrado, Universidad Nacional de Tumbes, Perú. Basto M. E. R. (2020). Cultivo del pez nativo Dormitator latifrons en sistemas semiintensivos en Bahía de Banderas, Nayarit-Jalisco, México y su evaluación como fuente de nutrientes. Tesis de Doctorado, Universidad de Guadalajara, México. http://dx.doi.org/10.3856/vol49-issue3-fulltext-2637 Bonifaz N., Campos M., Castelo R. (1985). El Chame, una nueva fuente de alimentación e ingresos. Fundación Ciencia. Ecuador. Bush C. P., Weis J. S. (1983). Effect of salinity on fertilization success in two populations of Fundulus heteroclitus. Biol. Bull. 164:406-417. http://doi.org/10.2307/1541250 Bussing W. A. (1987). Peces de las aguas continentales de Costa Rica. Editorial Universidad de Costa Rica. Castro-Rivera R., Aguilar-Benítez G., Hernández-Girón J. P. (2005). Conversión alimenticia en engordas puras y mixtas de Popoyote (Dormitator latifrons Richardson) en estanques de cemento. Rev. AquaTIC 23:45-52. https://www.redalyc.org/pdf/494/49402304.pdf Chang B. D., Navas W. (1984). Seasonal variations in growth, condition and gonads of Dormitator latifrons (Richardson) in the Chone River Basin, Ecuador. Journal of Fish Biology 24(6):637-648. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1984.tb04834.x Delgado C. F. (2016). Estado del conocimiento del "Chame" (Dormitator latifrons) y su relación con la investigación y producción acuícola en el Ecuador. Tesis de pregrado, Escuela Superior Politécnica del Litoral, Guayaquil, Ecuador. https://www.dspace.espol.edu.ec/bitstream/123456789/41390/1/D-76561%20Delgado%20Benites.pd Departamento Medicamentos Veterinarios (2024). Prospecto Gonavet Veyx 50 μg/ml solución inyectable. Agencia Española de Medicamentos y Productos Sanitarios. Ministerio de Sanidad de España. https://cimavet.aemps.es/cimavet/pdfs/es/p/3239+ESP/P_3239+ESP.pdf EcoCostas. (2006). El Cultivo de Chame (Dormitator latifrons) en el Estuario del Río Cojimíes. Proyecto para la Conservación y Desarrollo del Estuario de Cojimíes (Sustainable Coastal Communities and Ecosystem Project-SUCCESS). Fielder D. S., Bardsley W. J., Allan G. L., Pankhurst P. M. (2005). The effects of salinity and temperature on growth and survival of Australian snapper, Pagrus auratus larvae. Aquaculture 250(1-2):201-214. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.04.045 Froese R. (2006). Cube law, condition factor and weight-length relationships: history, meta-analysis and recommendations. Journal of Applied Ichthyology 22:241-253. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2006.00805.x Froese R., Pauly D. Editors. (2023). FishBase. World Wide Web electronic publication. www.fishbase.org, version (02/2023). Larumbe E. (2002). Algunos aspectos biológicos de los Popoyotes (Dormitator latifrons) en cautiverio. Panorama Acuícola. https://seafood.media/panoramacuicola/noticias/noticia%203.htm Navarro-Rodríguez M. C., González-Guevara L. F., Flores-Vargas R., González-Ruelas M. E., Carrillo-González F. M. (2006). Composición y variabilidad del ictioplancton de la laguna El Quelele, Nayarit, México. Rev. Biol. Marina Oceanogr. 41:35–43. http://dx.doi.org/10.4067/S0718-19572006000100006 Nikolsky G. V. (1963). The Ecology of Fishes. New York: Academia Press. Okamoto T., Kurokawa T., Gen K., Murashita K., Nomura K., Kim S. K., Matsubara H, Ohta H., Tanaka H. (2009). Influence of salinity on morphological deformities in cultured larvae of Japanese eel, Anguilla japonica, at completion of yolk resorption. Aquaculture 293(1-2):113-118. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2009.04.005 Ramírez-Alvarado M., Boza-Abarca J. (2019). Inducción del chame, Dormitator latifrons (Eliotridae), con GnRH, hormona liberadora de hormona luteinizante. World Aquaculture Society, LAQUA19, San José Costa Rica. Reyes-Mero, B., Santana-Piñeros A. M., Muñoz-Chumo L., Cruz-Quintana Y., Gisbert E. (2022). Yolk Absorption Rate and Mouth Development in Larvae of Dormitator latifrons (Perciformes: Eleotridae). Fishes 7:375. https://doi.org/10.3390/fishes7060375 Ricker W. (1975). Computation and interpretation of biological statistics of fish populations. Bulletin Fisheries Research. Board of Canada. 191:1-382. Rodríguez G., Haws M. (2009). Stock Assessment of “Chame” Dormitator latifrons in Nayarit and South of Sinaloa México. Final Reports: Investigations 2009–2011, Indigenous Species Development /Study/09IND04UH. Rodríguez Monte de Oca G. A. (2001). Evaluación de la calidad del esperma del botete Diana Sphoeroides annulatus (Jenyns, 1834) en condiciones de cautiverio y bajo inducción hormonal con LHRHa. Tesis de Maestría, Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, Mazatlán, Sinaloa, México. Rodríguez-Monte de Oca G. A. R. M., Medina-Hernández E. A., Velázquez-Sandoval J., López-López V. V., Román-Reyes J. C., Dabrowski K., Haws M. C. (2012). Producción de larvas de Chame (Dormitator latifrons, Pisces: Eleotridae) usando GnRHa and LHRHa. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias 25(3):422-429. http://www.scielo.org.co/scielo.php?pid=S0120-06902012000300010&script=sci_arttext Santerre M. T. (1976). Effects of temperature and salinity on the eggs and early larvae of Caranx mate (Cuv. & Valenc.) (Pisces: Carangidae) in Hawaii. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 21(1):51-68. https://doi.org/10.1139/f68-043 Todd E. S. (1975). Vertical movement and development of the prolarvae of the eleotrid fish, Dormitator latifrons. Copeia 3:564- 568 https://doi.org/10.2307/1443659 Vicuña O. (2010). Peces nativos de agua dulce de América del Sur de interés para la acuicultura: Una síntesis del estado de desarrollo tecnológico de su cultivo. Flores-Nava, A., Brown, A. (Eds), FAO, Serie Acuicultura en Latinoamérica N°1. https://openknowledge.fao.org/items/60d1f15c-8fb3-4b09-b46d-3fc1964b22a2 Yang Z, Chen Y. (2006). Salinity tolerance of embryos of obscure puffer Takifugu obscures. Aquaculture 253:393-397. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.08.014 Yáñez-Arancibia A., Díaz-González G. (1977). Ecología trofodinámica de Dormitator latifrons (Richardson) en nueve lagunas costeras del Pacífico de México. (Pisces: Eleotridae). An. Centro Cienc. Mar y Limnol. Univ. Nal. Auton. México 4(1):125-139. Zohar Y., Mylonas C. (2001). Endocrine manipulations of spawning in cultured fish: from hormones genes. Aquaculture 197(1-4):99-136. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00584-1
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Machine scores (provisional)
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