Notice bibliographique
Résumé
Reporter genes have become powerful tools to study regulation of gene expression in eukaryotes. In particular, chimeric transcription units generated by the fusion of the appropriate DNA regulatory sequences to reporter genes have led to the identification of a great number of DNA control elements that constitute eukaryotic promoters. Recently, transcription factors that interact with specific DNA control elements have been purified and the cDNAs encoding these DNA-binding proteins have been cloned. Among these factors, the steroid hormone receptors have been shown to belong to a superfamily of transcription factors that regulate gene expression in a liganddependent fashion (1). The cloning of their respective cDNAs provided the opportunity to identifjr the functional domains for hormone binding, DNA binding, and transactivation present in these proteins. To perform these studies, we developed a screening assay that uses cultured cells transfected with two expression vectors (2). The first vector directs the expression of the wild-type or in vitro mutagenized receptor, and the second contains a reporter gene linked to a hormone-responsive promoter. Application of the hormone or a related synthetic drug activates the reporter gene, and the effects of the mutations on the ability of hormone/receptor complex to acti vate gene expression can be assessed. Because of the large number of experiments to be performed in these studies, the use of chloramphenicol acetyl transferase (CAT) (originally used in our cotransfection assay) as a reporter gene proved to be both laborious and onerous. In contrast, the luciferase gene possesses intrinsic qualities that most other reporter genes lack greater sensitivity, ease of use, instantaneous quantification, " environment friendliness" (no radiolabeled compound or organic solvent is used in this assay), and cost efficiency. Here, the properties of the luciferase system are briefly discussed and a simple and rapid protocol used in my laboratory to assay luciferase activity in extract obtained from cultured mammalian cells transfected with a luciferase reporter gene.
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Comment cette classification a été obtenuedéplier
Prédiction distillée sur la base complète
Imitation des enseignantsNi prévalence calibrée, ni vérité terrain. Validation humaine à venir. Apprise à partir de 10 348 étiquettes directes de Codex et de 10 348 étiquettes directes de Gemma. Le mode candidate est l'union des têtes enseignantes seuillées; le consensus est leur intersection. Ces sorties portent le statut machine_predicted_unvalidated et ne sont ni des étiquettes humaines ni des étiquettes directes de modèles de pointe.
Scores Codex et Gemma par catégorie
| Catégorie | Codex | Gemma |
|---|---|---|
| Métarecherche | 0,000 | 0,000 |
| Méta-épidémiologie (sens strict) | 0,000 | 0,000 |
| Méta-épidémiologie (sens large) | 0,000 | 0,000 |
| Bibliométrie | 0,000 | 0,000 |
| Études des sciences et des technologies | 0,000 | 0,000 |
| Communication savante | 0,000 | 0,000 |
| Science ouverte | 0,000 | 0,000 |
| Intégrité de la recherche | 0,000 | 0,000 |
| Charge utile insuffisante (le modèle a refusé de juger) | 0,000 | 0,000 |
Scores machine (provisoires)
Les deux têtes enseignantes du modèle étudiant, lues sur ce travail. Un score ordonne la base pour la relecture; il n'affirme jamais une catégorie, et le statut de validation accompagne chaque rangée tel quel.
Scores de référence d'un modèle non mature (critères de maturité non atteints, 7 itérations). Un score ordonne; il n'affirme jamais une catégorie.
score_only:v0-immature-baseline · tel quel depuis la passe de notation : score_only signifie que le nombre peut ordonner les travaux, et qu'aucune étiquette de catégorie n'en découleClassification
machine, non validéePrédiction automatique; un appel candidat d’une seule tête enseignante, pas un consensus.
Le détail, modèle par modèle et score par score, se trouve en fin de page sous « Comment cette classification a été obtenue ».